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TINCION BAAR PARTE I

Muestra: Para investigar infecciones del tracto respiratorio inferior:

A- Esputo –VER CULTIVO ESPUTO TOMA DE MUESTRA-
B- Lavado gástrico
C- Lavado broncoalveolar
D- Hisopado laríngeo
E- Aspirado traqueal y transtraqueal

TOMA DE MUESTRAS:

   ASPIRADO TRAQUEAL :

    * Colecte el espécimen a través de una traqueotomía o tubo endotraqueal.
    * Con cuidado pase el catéter de polyetileno a través del sitio dentro de la tráquea.
    * Aspire el material de la tráquea utilizando una jeringuilla o un succionador intermitente.
    * Remueva el catéter y descarte la jeringuilla.
    * Envíe al laboratorio.
    * No refrigere la muestra.

ASPIRADO TRANSTRAQUEAL :

    * Utilice este método cuando su resultado puede influir grandemente en la terapia, cuando los procedimientos no invasivos no han sido productivos, cuando la infección no está siendo controlada, cuando se sospeche infección por anaerobios o cuando el paciente está comatoso.
    * Anestesie la piel del sitio de la colección y prepare asépticamente el área.
    * Inserte una aguja calibre 14 a través de la membrana cricotiroidea.
    * Pase un catéter de polyetileno calibre 16 a través de la aguja hacia la tráquea inferior. Remueva la aguja.
    * Aspire la secreción con una jeringuilla de 20 ml o un succionador.
    * Si la secreción es escasa, inyecte lentamente de 2 a 4 ml de solución salina estéril para inducir la tos, lo que usualmente produce un adecuado espécimen.
    * Envíe el envase colector con el tubo incrustado al laboratorio prontamente.
    * Evite la entrada de aire al envase colector.
    * No refrigere la muestra.

  MUESTRA POR BRONCOSCOPIA :

    * Colecte el espécimen vía broncoscopio.
    * El cepillado bronquial es preferido al lavado, ya que el lavado es más diluido.
    * Anestesie el área con Lidocaina tópica al 2% preferiblemente.
    * Haga que el paciente inhale por la boca y exhale por la nariz.
    * Lubrique ambas fosas nasales con Xylocaina en jalea.
    * El paciente pudiera necesitar Demerol intravenoso para tolerar el broncoscopio.
    * Lubrique el broncoscopio con Xylocaina al 2% en jalea, evitando tocar la punta distal.
    * Introduzca el broncoscopio intranasalmente.

   PARA LAVADO BRONQUIAL
    * Sujete una trampa de Lukens al broncoscopio.
    * Introduzca 10 ml de solución salina no bacteriostática a través del canal abierto.
    * Succione el material desde afuera.
    * Selle el tubo de la trampa y envíe al laboratorio.
   

PARA CEPILLADO BRONQUIAL
    * Utilice un broncoscopio de doble lumen.
    * Inserte la brocha citológica dentro del canal abierto del broncoscopio y avance.
    * Empuje la brocha fuera de su protector y realice el cepillado.
    * Jale la brocha hacia dentro de su protector y remueva la unidad de brocha completa.
    * Coloque la brocha dentro del tubo de transporte conteniendo solución salina o Ringer’s lactato.

    * Recuerde que la brocha se seca al aire rápidamente, lo cual es negativo para el cultivo
    * Envíe al laboratorio inmediatamente.
    * Si desea estudio por micobacterias, puede colocar la brocha dentro de un tubo conteniendo 10 ml de caldo de Middlebrook 7H9.

  PARA LAVADO BRONQUIO-ALVEOLAR ( BAL ) :
    * Sujete una trampa de espécimen de 70 ml al broncoscopio.
    * Introduzca 100 ml de salina no bacteriostática a través del canal en pociones de 20 ml.
    * Después de la tercera o cuarta inyección de salina, reemplace la trampa de 70 ml por una de 40 ml..
    * Envíe las trampas al laboratorio ó 10 ml de líquido de cada una en tubos estériles.

COMENTARIO: El mayor problema con el lavado bronquial, es la inhibición de las bacterias por la solución anestésica.

El cepillado bronquial solamente obtiene 0.001 ml de muestra, por lo que la brocha debe ser rápidamente colocada en el líquido de transporte para evitar la desecación.
La muestra colectada vía broncoscopio puede ser fácilmente contaminada con la flora oral. Esto puede reducirse utilizando un broncoscopio de triple lumen.
El lavado bronquioalveolar es preferido especialmente cuando el cultivo de esputo no ha sido satisfactorio.
El análisis cuantitativo de la muestra por lavado broncoalveolar, es clínicamente más relevante que el análisis de la muestra de esputo.

-Otras muestras:

F- Orina
G- Materia fecal
H- Líquido pleural, ascítico y otros
I- Biopsias y material resecado
J- LCR
K- Tejido cutáneo y subcutáneo
L- Muestras de sangre
M- Pus

Método:

  • Baciloscopía directa: exámen microscópico de la muestra previa tinción de Ziehl-Nielsen (ácido-alcohol resistente).
  • Cultivo en medio de Lowestein Jensen – Stone Brinck o Middlebrook 7H11.



Las bacterias a las que comúnmente se las denomina alcohol acido-rresistentes
(género Mycobacterium) tienen la característica fundamental
de resistir la decoloración con ácidos fuertes (ácido
clorhídrico, ácido nítrico, etc.), cuando previamente
son teñidas con una solución de fucsina básica
en caliente. Hay distintas teorías que tratan de explicar esta
característica, pero aún actualmente no se ha llegado
a conocerla con certeza. Equipo compuesto por:


Solución
de Fucsina
Solución Decolorante
Solución
de Azul de Metileno

TINCION DE BAAR VERESQUEMA DE TINCION DEL BAAR

Significado clínico:

    • El complejo Mycobacterium tuberculosis está integrado por tres especies: M. tuberculosis, M.bovis y M.africanum patógenos para el hombre y transmisibles de individuo a individuo por vía de aerosoles.
    • Son los agentes etiológicos de la tuberculosis, siendo el M.tuberculosis el causante de la mayoría de los casos.
    • M.bovis tiene como huésped natural el ganado bovino y desde el animal puede ser transmitido al hombre.
    • La
      tuberculosis debe sospecharse en pacientes que tienen fiebre, tos
      crónica y expectoración por más de 15 días y especialmente los que
      tienen infección por HIV.
    • Las especies que viven libremente en el
      ambiente se denominan oportunistas. Las mismas causan frecuentemente
      patología en huésped inmunocomprometidos (SIDA) generalmente diseminada
    • El complejo MAI integrado por M.avium y M.intracellulare
      es el complejo de micobacterias oportunistas de mayor incidencia. No
      existe evidencia de que las mismas sean transmisibles de hombre a
      hombre.
Para que el aislamiento del complejo MAI se considere patógeno se requiere al menos uno de los siguientes criterios:
1. Evidencia clínica de un proceso infeccioso que puede ser asociado a infección por micobacterias atípicas
2. Aislamiento en el esputo en forma reiterada de la misma especie de micobacteria.
3. Exclusión de otra etiología posible.
4. Biopsia que demuestra la presencia de bacilos ácido-alcohol resistentes.
5. No aislar simultáneamente M.tuberculosis

Utilidad clínica

Las muestras de A-E sirven para el diagnóstico de tuberculosis pulmonar.

El
esputo es la muestra de mayor rendimiento porque con ningún otro
especímen se superan los resultados bacteriológicos para el diagnóstico
de tuberculosis y todas las otras muestras deben cultivarse.

El lavado gástrico se emplea en niños pequeños y en pacientes incapaces de expectorar, buscando el esputo deglutido.

El
lavado broncoalveolar se emplea en pacientes incapaces de expectorar,
el procedimiento puede provocar la expectoración, resultando aún más
útil que el mismo lavado. Instruir al paciente para que recoja la misma
durante las 24 horas siguientes.

Las muestras F-M deben
necesariamente cultivarse debido a los escasos bacilos presentes y a la
fácil contaminación de alguna de las mismas con bacterias saprófitas.
La ausencia de bacilos ácido-alcohol resistente (BAAR) en la
baciloscopía no descarta tuberculosis. Así mismo la observación de
tales bacilos no es diagnóstico (no asegura la presencia de enfermedad).

Se
realizarán hemocultivos en pacientes infectados por HIV o en casos
clínicos de SIDA, siendo un elemento diagnóstico fundamental en el caso
de enfermedad diseminada asociada al SIDA.

 Cultivo a utilizar para Micobacterium spp. el medio de Lowestein Jensen

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